Сезонная и суточная динамика азотсодержащих соединений в листьях очитника трехлистного в условиях таёжной зоны европейского Северо-Востока

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Исследовали сезонную и суточную динамику содержания азотсодержащих соединений в листьях растений Hylotelephium triphyllum (Haw.) Holub. Установлено, что максимальное содержание в листьях общего азота, растворимого белка и свободных аминокислот приходилось на фазу отрастания с последующим их снижением к концу вегетации. Суточная динамика характеризовалась высоким содержанием свободных аминокислот и низким – растворимого белка в утренние часы. В листьях H. triphyllum было обнаружено 23 свободных аминокислоты и 2 амида. Сезонная и суточная динамика свободных аминокислот определялась содержанием глютамина и глютаминовой кислоты. Обнаружено 4 непротеиногенных аминокислоты: γ-аминомасляная, β-аланин, орнитин, цитрулин. Суммарная доля непротеиногенных аминокислот увеличивалась по мере старения листьев с 0,6% от суммы аминокислот при отрастании до 5,8% в фазу плодоношения, что соответствовало уменьшению в них содержания растворимого белка. Сезонную и суточную динамику непротеиногенных аминокислот определяла в основном γ-аминомасляная кислота. Среди аминокислот, используемых в качестве индикатора стресса, преобладали аланин и γ-аминомасляная кислота. Предполагается, что в регуляцию кислотности клеточного сока в листьях Hylotelephium triphyllum определенный вклад вносит γ-аминомасляная кислота. При низкой влажности воздуха и почвы (фаза цветения) кислотность клеточного сока значимо коррелирует с содержанием в листьях свободных аминокислот.

Полный текст

На территории европейского Северо-Востока сем. Crassulaceae (толстянковые) представлена тремя родами, включающими пять видов [1, с. 89]. Одним из представителей сем. Crassulaceae на Севере является очитник трехлистный (Hylotelephium triphyllum (Haw.) Holub). В Республике Коми вид имеет широкую экологическую амплитуду и обширно распространен на данной территории [2, с. 27]. Характерным признаком растений сем. Crassulaceae является кислотный метаболизм или САМ-тип фотосинтеза, который, как правило, проявляется лишь в условиях сильного и длительного водного стресса [3, p. 559, 560; 4, с. 190]. H. triphyllum является одним из немногих видов природной флоры таежной зоны, способным к фотосинтетической ассимиляции СО₂ по САМ-типу. Ранее нами было показано, что фотосинтетический аппарат толстянковых, обитающих в условиях холодного климата, хорошо адаптирован к низким положительным и умеренным температурам, что позволяет растениям обеспечить уровень метаболизма, необходимый для реализации жизненной стратегии на Севере [2, с. 181]. Исследования анатомического строения показали, что в листьях H. triphyllum отсутствует специализированная водозапасающая ткань [5, с. 675] и они характеризуются высокой водоудерживающей способностью. Этому способствует накопление осмотически активных соединений – растворимых белков, аминокислот, амидов. Аминокислоты, образуясь в процессе фотосинтеза или в результате синтетической деятельности корней, в дальнейшем участвуют в разнообразных биохимических процессах. Аминокислоты – активнейшие участники практически всех сторон метаболизма растения. По сути, они являются материалом, благодаря которому происходит строительство растительных клеток. Кроме того, показано, что аминокислоты могут выступать в качестве сигнальных молекул при адаптивных реакциях на стрессовые факторы [6, p. 4, 13; 7, p. 1049, 1050; 8, с. 92], являются предшественниками структурных компонентов некоторых гормонов растений [7, p. 1050] и могут выступать в качестве предшественников ряда вторичных метаболитов [9, p. 1208]. Большой интерес в этом отношении представляет изучение аминокислотного состава растений, способных индуцировать переход с C₃ на CAM метаболизм при стрессовых воздействиях [10, с. 93].

Цель работы: исследование сезонной и суточной динамики азотсодержащих соединений в листьях Hylotelephium triphyllum (Haw.) Holub. в природных условиях.

Материалы и методы

Очитник трехлистный (Hylotelephium triphyllum (Haw.) Holub) – многолетнее травянистое растение с клубневидно-утолщенными корнями сем. Crassulaceae. Побеги монокарпические, неразветвленные. Листорасположение очередное, листья уплощенные, продолговато-яйцевидной формы с толстой кутикулой. Размножается семенами, частями стеблей и корневища [2, с. 91, 94]. На территории Республики Коми встречается в пойме, на склонах, вырубках, бечевниках. Произрастает на глинистой, песчаной и супесчаной почве, известняках, сланцевых обнажениях и скалах.

Полевые исследования проводились в вегетационные периоды 2016–2019 гг. в подзоне средней тайги Республики Коми. В работе использовали растения, произрастающие на слабо покрытом растительностью участке с дерново-слоистой песчано-супесчаной, хорошо дренируемой почвой в прирусловой части поймы левого берега р. Вымь вблизи Лесоэкологического стационара Института биологии Коми НЦ УрО РАН. Зрелые листья отбирали с верхней трети побега 20–30 типичных растений в разное время суток в период отрастания (май), бутонизации (июнь), цветения (июнь-июль) и плодоношения (август). Образцы листьев для биохимических анализов фиксировали в жидком азоте и хранили при температуре −80°С. Определение свободных аминокислот проводили в лиофильно высушенном материале на аминокислотном анализаторе AAA-400 (Чехия) в системе литиевых буферов. Для их определения навески 3-кратно экстрагировали 40% этанолом, выпаривали при температуре +50°С. Упаренный экстракт разводили в цитрат-литиевом буфере (рН 2,2), центрифугировали 10 мин. при 15 тыс. оборотов, фильтрат наносили на ионообменную колонку. Идентификацию и количественное содержание аминокислот в исследуемых образцах проводили по результатам разделения стандартной смеси аминокислот. Содержание растворимого белка определяли по методу Bredford [11], используя в качестве стандарта бычий сывороточный альбумин. Общий азот определяли с помощью элементного CHNS-O анализатора «EA-111» (Чехия). Рассчитывали средние значения из трех биологических и двух аналитических повторностей.

Результаты и их обсуждение

Исследования содержания общего азота, растворимого белка и свободных аминокислот в листьях H. triphyllum в разные годы и периоды вегетации позволили выявить сезонные и суточные изменения этих показателей. На рис. 1 видно, что содержание общего азота определялось фазой развития растений. При отрастании в молодых листьях отмечалось максимальное содержание общего азота (24,4 ± 2,2 мг/г сухой массы). Линейный рост побега у H. triphyllum детерминирован, появление новых метамеров прекращается с переходом растений к генеративному развитию. Поэтому по мере старения листьев содержание азотистых соединений в них уменьшалось до 13,1 ± 1,4 мг/г сухой массы в фазу плодоношения (рис. 1).

Основную массу азотистых веществ листьев составляют белки. Анализ данных показывает, что изменения содержания растворимого белка соответствовало динамике содержания общего азота (рис. 1). Максимальный уровень растворимого белка отмечен в листьях молодых растений (отрастание) при значительном его снижении к фазе плодоношения. Наблюдается высокая корреляция (r = 0,96) между содержанием общего азота и растворимого белка.

 

Рисунок 1 – Сезонная динамика содержания общего азота и растворимого белка в листьях Hylotelephium triphyllum

 

Анализ показал, что достоверных изменений содержание общего азота в листьях в течение суток не наблюдалось. Однако в фазы бутонизации и цветения отмечалось минимальное его количество в полуденные часы (табл. 1). Наиболее четко проявлялась суточная динамика содержания в листьях растворимого белка. В фазы бутонизации и цветения минимальное накопление растворимого белка зарегистрировано в ранние утренние часы, в полуденные часы его содержание несколько повышалось, с максимумом в вечернее время (табл. 1).

 

Таблица 1 – Суточная динамика содержания общего азота и растворимого белка в листьях Hylotelephium triphyllum, мг/г сухой массы

Фаза развития

Время суток, ч.

Растворимый белок

Общий азот

Бутонизация

06:00

6,56 ± 0,4*

19,5 ± 2,2

12:00

6,91 ± 0,7

18,5 ± 2,0

21:00

8,23 ± 0,6*

19,2 ± 2,1

Цветение

06:00

5,04 ± 0,3*

17,2 ± 1,9

12:00

6,72 ± 0,7

16,4 ± 1,8

21:00

8,98 ± 0,91*

17,1 ± 1,9

Примечание. * – различия между содержанием растворимого белка в утренние и вечерние часы значимы на уровне p <0,05.

 

Аминокислоты и амиды являются наиболее распространенной группой подвижных азотистых соединений. В листьях H. triphyllum обнаружены значительные сезонные и суточные изменения содержания свободных аминокислот. Всего в листьях H. triphyllum было обнаружено 23 свободных аминокислоты и 2 амида. В составе аминокислот доминируют 10 соединений, содержание которых в среднем за вегетацию составляют не менее 1% суммы аминокислот (табл. 2). В число доминирующих аминокислот входят глютаминовая, аспарагиновая и их амиды глютамин и аспарагин, а также серин, треонин, аланин, фенилаланин, аргинин, γ-аминомасляная. Доля большинства свободных аминокислот (пролин, глицин, цитрулин, α-аминобутировая, валин, цистеин, метионин, лейцин, изолейцин, тирозин, β-аланин, орнитин, гистидин, 3-метилгистидин, лизин) ниже 1% от суммы аминокислот. Максимальное содержание свободных аминокислот отмечено при отрастании (табл. 2). Основная часть синтезируемых аминокислот в листьях молодых интенсивно растущих побегов H. triphyllum представлена амидами, их доля составляла почти 90% всей суммы аминокислот и амидов (табл. 2). Причем доминировал глютамин, его концентрация значительно выше, чем аспарагина. К началу генеративного развития содержание свободных аминокислот снижалось в 4 раз. Эти изменения сводятся в основном к уменьшению количества свободных аминокислот, и особенно глютамина, без заметных качественных изменений аминокислотного состава. Следует только отметить появление в фазу цветения небольшого количества цитрулина (3–5 мкг) и α-аминобутировой кислоты (9–15 мкг). С возрастом происходит накопление в листьях γ-аминомасляной кислоты и аланина, причем как в абсолютных, так и относительных величинах, что, возможно, связано с замедлением и прекращением ростовых процессов через торможение новообразования белка. Содержание свободных аминокислот статистически значимо коррелирует с концентрацией растворимого белка в листьях.

Анализ показал, что коэффициент вариации суммы свободных аминокислот в течение суток был небольшим и составлял 25–28%. Максимальное количество свободных аминокислот в листьях H. triphyllum отмечалось в утренние часы. В вечернее время наблюдалась тенденция к снижению свободных аминокислот, особенно в фазу цветения (табл. 3).

Уменьшение свободных аминокислот происходило в основном за счет снижения как абсолютного содержания глютаминовой кислоты, так и её доли в сумме свободных аминокислот. В течение суток достоверно изменялось содержание глютаминовой, γ-аминомасляной кислот и аланина. Доля глютамина в фазу бутонизации повышалась в течение дня, а в фазу цветения оставалась на одном уровне (табл. 3).

В составе свободных аминокислот листьев H. triphyllum присутствовали непротеиногенные аминокислоты: γ-аминомасляная, β-аланин, орнитин и в следовых количествах цитрулин. Суммарная доля непротеиногенных аминокислот увеличивалась по мере старения листьев с 0,6% от суммы аминокислот при отрастании до 5,8%, в фазу плодоношения (табл. 2), что соответствовало уменьшению в них содержания растворимого белка. Сезонную и суточную динамику непротеиногенных аминокислот определяла в основном γ-аминомасляная кислота.

Пролин, аланин, фенилаланин и γ-аминомасляную кислоту часто используют в качестве индикатора стресса, так как их содержание изменяется под воздействием неблагоприятных факторов среды [8, с. 92; 12, с. 321; 13, с. 59; 14, с. 740; 15, с. 99]. Как показано в табл. 2, значительное увеличение доли этих аминокислот наблюдалось в генеративные фазы развития (цветение, плодоношение), которые приходились на наиболее теплые и сухие периоды вегетации. Анализ состава стрессовых аминокислот показал, что их основную долю составлял аланин – 46–56% от суммы стрессовых аминокислот, что соответствует роли этой аминокислоты в уменьшении воздействия неблагоприятных условий окружающей среды [16, p. 1; 17, p. 2331] и γ-аминомасляная кислота (32–36%), которая в зависимости от напряжённости стрессовых факторов быстро накапливается до высоких концентраций [18, p. 446; 19, p. 3755]. Фаза цветения растений H. triphyllum приурочена к самому теплому и сравнительно сухому периоду вегетации. Во все годы исследований в местах произрастания относительная влажность воздуха составляла 45–50%, влажность почвы колебалась в пределах 15–20%. Ранее было показано, что в этот период растения H. triphyllum способны функционировать по САМ-типу фотосинтеза, о чем свидетельствуют ряд показателей, в том числе повышение кислотности клеточного сока [10, с. 99]. Переход на САМ-тип позволяет растениям снизить потери влаги, что необходимо при произрастании на легко теряющих влагу песчано-супесчаных почвах. Как известно, свободные аминокислоты, входящие в состав клеточного сока, влияют на его осмотический потенциал, а значит, и на поступление воды в клетку. Отсюда следует, что определенную роль в закислении клеточного сока играют и свободные аминокислоты, в том числе γ-аминомасляная, которая, по данным [20, p. 865], участвует в регулировании внутриклеточного рН. Суточные изменения уровня кислотности клеточного сока соответствуют динамике содержания свободных аминокислот. В фазу цветения кислотность клеточного сока значимо коррелирует с содержанием в листьях свободных аминокислот.

 

Таблица 2 – Сезонная динамика содержание свободных аминокислот в листьях Hylotelephium triphyllum, мкг/сухой массы (% от суммы)

Аминокислоты

Фаза развития

Отрастание

Бутонизация

Цветение

Плодоношение

Аспарагиновая

729 ± 140 (2,8)

427 ± 81 (6,9)

459 ± 87 (11,9)

459 ± 87 (11,6)

Треонин

74 ± 15 (0,3)

80 ± 16 (1,3)

56 ± 11 (1,5)

56 ± 11 (1,4)

Серин

227 ± 46 (0,9)

140 ± 28 (2,3)

143 ± 29 (3,7)

177 ± 35 (4,5)

Аспарагин

189 ± 35 (0,7)

64 ± 12 (1,0)

77 ± 15 (2,0)

98 ± 19 (2,5)

Глютаминовая

963 ± 100 (3,7)

902 ± 94 (14,6)

403 ± 45 (10,5)

533 ± 54 (13,5)

Глютамин

22869 ± 3120 (88,2)

3759 ± 527 (60,8)

1725 ± 242 (45,0)

1742 ± 244 (44,0)

Аланин

254 ± 41 (1,0)

294 ± 47 (4,7)

289 ± 31 (7,5)

310 ± 50 (7,8)

Фенилаланин

43 ± 8 (0,2)

51 ± 9 (0,8)

52 ± 9 (1,4)

51 ± 9 (1,3)

γ-аминомасляная

144 ± 21 (0,6)

174 ± 26 (2,8)

186 ± 28 (4,8)

213 ± 32 (5,4)

Аргинин

53 ± 9 (0,2)

50 ± 8 (0,8)

70 ± 11 (1,8)

46 ± 7 (1,2)

Сумма аминокислот

25938 ± 5188

6184 ± 1237

3780 ± 746

3958 ± 792

Сумма НПАК

168 (0,6)

180 (2,9)

216 (5,7)

231 (5,8)

Сумма САК

450 (1,7)

527 (8,5)

543 (14,4)

584 (14,7)

Примечание. В таблице представлены аминокислоты, содержание которых среднем за вегетацию составляло не менее 1% суммы аминокислот. НПАК – непротеиногенные аминокислоты, САК – стрессовые аминокислоты.

 

Таблица 3 – Суточная динамика содержания свободных аминокислот в листьях Hylotelephium triphyllum

Аминокислоты

Бутонизация

Цветение

Время суток, ч.

06:00

12:00

21:00

06:00

12:00

21:00

Аминокислоты, мкг/г сухой массы

Аспарагиновая

381 ± 76

427 ± 81

340 ± 68

419 ± 79

459 ± 87

368 ± 70

Треонин

58 ± 11

80 ± 16

41 ± 8

80 ± 16

56 ± 11

64 ± 13

Серин

100 ± 20

140 ± 28

61 ± 12

111 ± 22

143 ± 29

108 ± 22

Аспарагин

73 ± 13

64 ± 12

32 ± 6

95 ± 17

77 ± 15

115 ± 21

Глютаминовая

1840 ± 202

902 ± 94

540 ± 56

640 ± 67

403 ± 45

370 ± 39

Глютамин

3112 ± 437

3759 ± 527

3690 ± 517

2831 ± 396

1725 ± 242

1823 ± 255

Аланин

163 ± 26

294 ± 47

168 ± 27

310 ± 50

289 ± 31

146 ± 23

Фенилаланин

43 ± 8

51 ± 9

36 ± 6

74 ± 12

52 ± 9

64 ± 10

γ-аминомасляная

149 ± 22

174 ± 26

121 ± 18

362 ± 54

186 ± 28

126 ± 19

Аргинин

25 ± 4

50 ± 8

72 ± 12

68 ± 11

70 ± 11

45 ± 7

Сумма аминокислот

6267 ± 1253

6184 ± 1237

5286 ± 1057

5426 ± 1085

3780 ± 746

3557 ± 711

Сумма НПАК

157

180

123

387

216

140

Сумма САК

367

527

337

781

543

347

 

Аминокислоты, % от суммы

Аспарагиновая

6,1

6,9

6,4

7,7

12,1

10,3

Треонин

0,9

1,3

0,8

1,5

1,5

1,8

Серин

1,6

2,3

1,2

2,0

3,8

3,0

Аспарагин

1,2

1,0

0,6

1,8

2,0

3,2

Глютаминовая

29,4

14,6

10,2

11,8

10,7

10,4

Глютамин

49,7

60,8

69,8

52,2

45,6

51,3

Аланин

2,6

4,8

3,2

5,7

7,6

4,1

Фенилаланин

0,7

0,8

0,7

1,4

1,4

1,8

γ-аминомасляная

2,4

2,8

2,3

6,7

4,9

3,5

Аргинин

0,4

0,8

1,4

1,3

1,8

1,3

Амиды

50,8

61,8

70,4

53,9

49,6

54,5

НПАК

2,5

2,9

2,3

7,1

5,7

3,9

САК

5,8

8,5

6,4

14,4

14,4

9,8

Примечание. НПАК – непротеиногенные аминокислоты, САК – стрессовые аминокислоты.

 

Заключение

Итак, нами выявлена сезонная и суточная динамика азотсодержащих соединений в листьях Hylotelephium triphyllum, одного из немногих видов природной флоры таежной зоны, способного к фотосинтетической ассимиляции СО₂ по САМ-типу. Показано, что максимальное содержание в листьях общего азота, растворимого белка и свободных аминокислот приходится на фазу отрастания (май) с последующим их снижением к концу вегетации. Суточная динамика характеризуется высоким содержанием в утренние часы в листьях свободных аминокислот и низким – растворимого белка. Сезонная и суточная динамика свободных аминокислот определялась в основном содержанием глютамина и глютаминовой кислоты. Установлено, что среди стрессовых аминокислот преобладают аланин и γ-аминомасляная кислота. Предполагается, что в регуляцию кислотности клеточного сока в листьях Hylotelephium triphyllum определенный вклад вносит γ-аминомасляная кислота. При низкой влажности воздуха и почвы (фаза цветения) кислотность клеточного сока значимо коррелирует с содержанием в листьях свободных аминокислот.

×

Об авторах

Галина Николаевна Табаленкова

Институт биологии Коми научного центра УрО РАН

Email: tabalenkova@ib.komisc.ru

доктор биологических наук, доцент, ведущий научный сотрудник лаборатории экологической физиологии растений

Россия, Сыктывкар

Екатерина Валерьевна Силина

Институт биологии Коми научного центра УрО РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: silina@ib.komisc.ru

кандидат биологических наук, старший лаборант-исследователь лаборатории экологической физиологии растений

Россия, Сыктывкар

Список литературы

  1. Флора Северо-Востока европейской части СССР. Т. 3. Л., 1976. 294 с.
  2. Головко Т.К., Далькэ И.В., Бачаров Д.С., Бабак Т.В., Захожий И.Г. Толстянковые в холодном климате (биология, экология, физиология). СПб.: Наука, 2007. 205 с.
  3. Keerle J.E., Rundel P.W. Evolution of CAM and C₄ carbon-concentrating mechanisms // International Journal of Plant Sciences. 2003. Vol. 164. P. 555-577.
  4. Кузнецов Вл.В., Нетто Д.С., Борисова Н.Н. и др. Стресс-индуцируемое формирование САМ и предельный адаптационный потенциал растений Mesembryanthemum crystallinum в экстремальных условиях // Физиология растений. 2000. Т. 47, № 2. С. 190-198.
  5. Головко Т.К., Далькэ И.В., Бачаров Д.С. Мезоструктура и активность фотосинтетического аппарата трех видов растений сем. Crassulaceae в холодном климате // Физиология растений. 2008. Т. 55, № 5. С. 671-680.
  6. Forde B.G., Lea P.J. Glutamate in plants: metabolism, regulation, and signalling // Journal of Experimental Botany. 2007. Vol. 58, № 9. P. 1-20.
  7. Walch-Liu P., Lin L.-H., Remans T., Tester M., Forde B.G. Evidence that l-glutamate can act as an exogenous signal to modulate root growth and branching in Arabidopsis thaliana // Plant and Cell Physiology. 2006. Vol. 47, № 8. P. 1045-1057.
  8. Колупаев Ю.Е., Карпец Ю.В. Активные формы кислорода, антиоксиданты и устойчивость растений к действию стрессоров. Киев: Логос, 2019. 277 с.
  9. Pinheiro C., Passarinho J.A., Ricardo C.P. Effect of drought and rewatering on the metabolism of Lupinus albus organs // Journal of Plant Physiology. 2004. Vol. 161, № 11. P. 1203-1210.
  10. Головко Т.К., Захожий И.Г., Табаленкова Г.Н. Индукция САМ-фотосинтеза у Hylotelephium triphyllum (Haw.) Holub (Crassulaceae) в условиях европейского Северо-Востока // Физиология растений. 2021. Т. 68, № 1. С. 93-102.
  11. Bradford M.M.A. Rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding // Analytical Biochemistry. 1976. Vol. 72. P. 248-254.
  12. Кузнецов В.В., Шевякова Н.И. Пролин при стрессе: биологическая роль, метаболизм регуляция // Физиология растений. 1999. Т. 46, № 2. С. 321-336.
  13. Сошинкова Т.Н., Радюкина Н.Л., Королькова Д.В., Носов А.В. Пролин и функционирование антиоксидантной системы растений и культивируемых клеток Thellungiella salsuginea при окислительном стрессе // Физиология растений. 2013. Т. 60, № 1. С. 47-60.
  14. Шевякова Н.И., Бакулина Е.А., Кузнецов В.В. Антиоксидантная роль пролина у галофита хрустальной травки при действии засоления и параквата, инициирующих окислительный стресс // Физиология растений. 2009. Т. 56, № 5. С. 736-742.
  15. Ибрагимова С.С., Горелова В.В., Кочетов А.В., Шумный В.К. Роль различных метаболитов в формировании стрессоустойчивости растений // Вестник Новосибирского государственного университета. Серия: Биология, клиническая медицина. 2010. Т. 8, вып. 3. С. 98-103.
  16. Sousa C.A.F., Sodek L. Alanine metabolism and alanine aminotransferase activity in soybean (Glycine max) during hypoxia of the root system and subsequent return to normoxia // Environmental and Experimental Botany. 2003. Vol. 50, № 1. P. 1-8.
  17. Limami A.M., Glevares G., Ricoult C., Cliquet J.B., Planchet E. Concerted modulation of alanine and glutamate metabolism in young Medicago truncatula seedlings under hypoxic stress // Journal of Experimental Botany. 2008. Vol. 59, № 9. P. 2325-2335.
  18. Shelp B.J., Bown A.W., McLean M.D. Metabolism and functions of gamma-aminobutyric acid // Trends in Plant Science. 1999. Vol. 4, № 11. P. 446-452.
  19. Mazzucotelli E., Tartari A., Cattivelli L., Forlani G. Metabolism of γ-aminobutyric acid during cold acclimation and freezing and its relationship to frost tolerance in barley and wheat // Journal of Experimental Botany. 2006. Vol. 57, № 14. P. 3755-3766.
  20. Crawford L.A., Bown A.W., Breitkreuz K.E., Guinel F.C. The synthesis of [gamma]-aminobutyric acid in response to treatments reducing cytosolic pH // Plant Physiology. 1994. Vol. 104, № 3. P. 865-871.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рисунок 1 – Сезонная динамика содержания общего азота и растворимого белка в листьях Hylotelephium triphyllum

Скачать (23KB)

© Табаленкова Г.Н., Силина Е.В., 2022

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах