Изотопный состав углерода (ẟ¹³C) и азота (ẟ¹⁵N) шерсти грызунов Вологодской области

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Исследование посвящено анализу соотношения стабильных изотопов углерода (ẟ¹³C) и азота (ẟ¹⁵N) в шерсти млекопитающих отряда Грызуны (обыкновенный бобр – Castor fiber Linnaeus, 1758; лесная мышь – Apodemus uralensis Pallas, 1811; водяная крыса – Arvicola amphibius Linnaeus, 1758; ондатра – Ondatra zibethicus Linnaeus, 1766; азиатский бурундук – Eutamias sibiricus (Laxmann, 1769); обыкновенная летяга – Pteromys volans Linnaeus, 1758; обыкновенная белка – Sciurus vulgaris Linnaeus, 1758) на территории Вологодской области. Изотопный состав углерода в шерсти исследованных животных варьирует от −28,2‰ до −17,9‰, азота – от 0,4‰ до 10,6‰. Значения ẟ¹³C в шерсти млекопитающих отряда Грызуны выше, а ẟ¹⁵N ниже, чем в шерсти млекопитающих отряда Хищные, исследованных ранее на территории Вологодской области. Соотношение тяжелых изотопов углерода и азота в шерсти животных, отловленных в разных районах Вологодской области, статистически значимо не различается. Установлено, что шерсть гидробионтов менее обогащена тяжелым изотопом углерода и более обогащена тяжелым изотопом азота, чем шерсть наземных представителей отряда Грызуны. Шерсть всеядных грызунов более обогащена тяжелым изотопом азота, чем шерсть фитофагов. Выявлено перекрытие изотопных ниш у отдельных видов грызунов. Установлено статистически значимое снижение тяжелого изотопа углерода в шерсти ондатры на 2,7‰ за 50 лет.

Полный текст

Введение

Соотношение стабильных изотопов углерода и азота является важным показателем в экологических исследованиях. Изотопный состав широко используется при изучении трофической экологии животных [1–4]. Изотопный состав отражает как трофический уровень, так и особенности спектра питания животного [5]. Разрешающая способность изотопного анализа существенно увеличивается при совместном использовании соотношения стабильных изотопов нескольких элементов [6–10].

Стабильные изотопы углерода отражают изотопный состав первичных продуцентов, лежащих в основе пищевой цепочки [11]. В процессе фотосинтеза происходит снижение содержания тяжелого изотопа углерода (¹³C) в тканях растений по сравнению с атмосферным CO₂. Разница в значениях δ¹³C среди растений обеспечивает естественную систему маркеров для отслеживания рациона растительноядных животных [12].

Изотопный состав азота (ẟ¹⁵N) в тканях животных зависит от их положения в пищевой цепи [13]. В процессе метаболизма более активно участвует легкий изотоп азота ¹⁴N, и это приводит к относительному увеличению концентрации ¹⁵N у животного по отношению к его пище. Таким образом, при потреблении пищи содержание тяжелого изотопа ¹⁵N увеличивается в организмах, занимающих более высокие трофические уровни [3].

Анализ стабильных изотопов является инструментом в современных исследованиях экологических ниш [14; 15]. Значения δ¹⁵N и δ¹³C в двумерном пространстве для разных видов в сообществе позволяют учитывать занятость изотопных ниш каждым видом, а также перекрытие между видами [16; 17].

Цель исследования: определение соотношения стабильных изотопов углерода (ẟ¹³C) и азота (ẟ¹⁵N) в шерсти млекопитающих отряда Грызуны на территории Вологодской области.

Материалы и методы

Сбор материала проводили на территории Вологодской области с 2015 по 2021 гг. Образцы шерсти животных были получены от охотников на промысловые виды млекопитающих и из зоологических коллекций музеев природы Вологодской области. Были собраны образцы шерсти 7 видов млекопитающих отряда Rodentia: обыкновенный бобр – Castor fiber Linnaeus, 1758 (n = 41); лесная мышь – Apodemus uralensis Pallas, 1811 (n = 6); водяная крыса – Arvicola amphibius Linnaeus, 1758 (n = 26); ондатра – Ondatra zibethicus Linnaeus, 1766 (n = 17); азиатский бурундук – Eutamias sibiricus (Laxmann, 1769) (n = 5); обыкновенная летяга – Pteromys volans Linnaeus, 1758 (n = 8); обыкновенная белка – Sciurus vulgaris Linnaeus, 1758 (n = 49). Общий объем выборки составил 152 особи.

Подготовку проб для анализа проводили стандартным методом [18]. Небольшой клочок шерсти срезали с чучела или шкурки животного и помещали в бумажный конверт с этикеткой. Шерсть нарезали на фрагменты не более 1 мм: объем измельченного образца шерсти составлял 0,5–1 мл. Измельченные образцы дважды по 40 минут промывали в растворе хлороформ-метанола 2:1 с использованием ультразвуковой ванны и микроцентрифуги. Промытые образцы высушивали в лиофильной сушилке в течении 48 часов. Высушенные образцы шерсти массой 297–363 мг (330 ± 33 мг) помещали в стандартные оловянные капсулы в лабораторных условиях при температуре 22 ± 1°C и относительной влажности 30 ± 5% с использованием весов Mettler Toledo WXTS3DU balance (точность ±1 мкг). Изотопный состав шерсти определяли в двукратной повторности на изотопном масс-спектрометре (IRMS) Thermo Fisher Delta V Advantage с элементным анализатором (Isolink Flash IRMS) в Региональном центре коллективного пользования Череповецкого государственного университета. Для калибровки использовали эталонные материалы USGS-40 и USGS-41. Изотопный состав азота и углерода выражали в тысячных долях отклонения от международного стандарта, δ (‰).

Поправка на эффект Зюсса не была применена к набору данных. Результаты измерений представлены в виде среднего арифметического, медианы, минимальных и максимальных значений, нижнего и верхнего квартилей, стандартного отклонения и стандартной ошибки среднего. Статистический анализ результатов проводили с использованием программного обеспечения Statistica 12 (версия 12 StatSoft USA 2013). Нормальность распределения данных в выборке оценивали с помощью критерия Шапиро–Уилка. Для анализа данных мы использовали: медианный критерий – критерий Краскела–Уоллиса и коэффициент ранговой корреляции Спирмена, при которых различия считались значимыми при р ≤ 0,05.

Результаты и их обсуждение

Соотношение стабильных изотопов углерода в шерсти исследованных видов грызунов Вологодской области в среднем составляет −23,2 ± 0,2% и варьирует в пределах от −28,2‰ у обыкновенного бобра до −17,9‰ у обыкновенной белки (табл. 1, рис. 1). Полученные значения выше, чем у хищных животных (от −27,9‰ до −20,1‰), исследованных ранее на территории Вологодской области [19; 20]. Результаты показывают, что пищевые цепи исследованных грызунов построены на доминирующих в лесополосе исследуемой территории растениях с С3 типом фотосинтеза, поскольку значения δ¹³C у таких растений варьируют от −35‰ до −20‰ [21].

 

Таблица 1 – Соотношение стабильных изотопов ẟ¹³C и ẟ¹⁵N в шерсти грызунов Вологодской области

 

N

Mean

Median

Min

Max

Q25

Q75

SD

SE

ẟ¹³C

152

−23,2

−23,9

−28,2

−17,9

−25,6

−20,5

2,9

0,2

ẟ¹⁵N

152

5,2

4,9

0,4

10,6

3,8

6,2

2,0

0,2

Примечание. N – количество образцов, Mean – среднее значение, Median – медиана, Min – минимальное значение в выборке, Max – максимальное значение в выборке, Q25% – нижний квартиль, Q75% – верхний квартиль, SD – стандартное отклонение, SE – стандартная ошибка среднего.

 

Рисунок 1 – Соотношение стабильных изотопов углерода (ẟ¹³C) в шерсти млекопитающих отряда Грызуны. Примечание здесь и далее: a, b, c – различные буквенные индексы, указывающие на наличие различий между видами (критерий Краскела–Уоллиса: p ≤ 0,05)

 

Соотношение стабильных изотопов азота в шерсти исследованных видов грызунов Вологодской области в среднем составляет 5,2 ± 0,2‰ и варьирует в пределах от 0,4‰ у обыкновенной белки до 10,6‰ у лесной мыши (табл. 1, рис. 2). Полученные значения ниже, чем у хищных животных (от 3,5‰ до 15,3‰), исследованных ранее на территории Вологодской области [19; 20].

 

Рисунок 2 – Соотношение стабильных изотопов азота (ẟ¹⁵N) в шерсти млекопитающих отряда Грызуны

 

Установлены статистически значимые различия δ¹³C в шерсти разных видов грызунов: шерсть обыкновенной белки (−19,7 ± 0,2‰) более обогащена тяжелым изотопом углерода по сравнению с шерстью обыкновенного бобра (−26,1 ± 0,2‰), лесной мыши (−24,9 ± 0,4‰), водяной крысы (−24,5 ± 0,2‰) и ондатры (−24,4 ± 0,5‰), а шерсть обыкновенной летяги (−22,4 ± 0,2‰) более обогащена тяжелым изотопом углерода по сравнению с шерстью обыкновенного бобра (−26,1 ± 0,2‰) (рис. 1). В ранее проведенном исследовании показано, что высокие значения δ¹³C в шерсти обыкновенной белки по сравнению с другими лесными грызунами связано с потреблением обогащенных ¹³C семян хвойных деревьев [4; 22].

Гидробионты, как правило, обеднены ¹³C [23]. Значения δ¹³C у бобра, водяной крысы и ондатры, которые ведут полуводный образ жизни и питаются прибрежными и водными растениями [24] близки к значениям, полученным в ранее проведенных исследованиях на территории Вологодской области для гидробионта выдры (−25,0 ± 0,7‰) [19].

Установлены статистически значимые различия ẟ¹⁵N в шерсти разных видов грызунов: шерсть лесной мыши (7,4 ± 0,9‰) и ондатры (6,6 ± 0,4‰) более обогащена тяжелым изотопом азота, по сравнению с шерстью азиатского бурундука (3,3 ± 0,5‰), обыкновенной летяги (3,3 ± 0,3‰) и белки (4,6 ± 0,3‰), а шерсть водяной крысы (5,8 ± 0,3‰) более обогащена тяжелым изотопом азота, по сравнению с шерстью обыкновенной летяги (3,3 ± 0,3‰) (рис. 2). Лесная мышь имеет высокую трофическую позицию среди грызунов, поскольку часто поедает животные корма (преимущественно беспозвоночных) наряду с семенами и ягодами [25]. Гидробионты – ондатра, водяная крыса и обыкновенный бобр имеют высокие значения ẟ¹⁵N, так как объекты водных экосистем обогащены ¹⁵N по сравнению с наземными [26].

Ткани потребителей обычно обогащаются тяжелыми изотопами азота по сравнению с их пищей. В среднем величина ẟ¹⁵N увеличивается на 2,5–5‰ на один трофический уровень [8; 27]. Наше исследование показало, что животные внутри одного отряда характеризуются высокой вариабельностью δ¹⁵N в шерсти, таким образом, млекопитающие отряда Грызуны могут занимать более одного трофического уровня.

Изотопный состав углерода и азота (изотопная ниша) млекопитающих определяется трофической нишей животных. Изотопные ниши бобра и белки не перекрываются изотопными нишами других исследованных видов, что является показателем того, что они эффективно разделяют трофические ниши и избегают конкуренции за ресурсы (рис. 3). Изотопные ниши лесной мыши, ондатры, водяной крысы перекрываются, так же как и изотопные ниши азиатского бурундука и обыкновенной летяги, что является показателем того, что формирование их трофических ниш происходило под влиянием сильной конкуренции (рис. 3).

 

Рисунок 3 – Соотношение стабильных изотопов углерода (ẟ¹³C) и азота (ẟ¹⁵N) в шерсти представителей отряда Грызуны

 

На примере обыкновенного бобра установлено, что соотношение тяжелых изотопов углерода (ẟ¹³C) и азота (ẟ¹⁵N) в шерсти животных отловленных в разных районах Вологодской области (Череповецкий район: n = 12, Кирилловский район: n = 24) статистически значимо не различаются (p > 0,005).

Анализ изменения изотопного состава (ẟ¹³C) шерсти грызунов с течением времени был проведен на примере ондатры, поскольку выборка представлена достаточным количеством образцов, собранных за период более 50 лет. Обнаружена отрицательная значимая корреляция между δ¹³C и датой отлова ондатры (р = 0,00) (рис. 4). Соотношение стабильных изотопов углерода (ẟ¹³C) в шерсти ондатры статистически значимо снизилось с 1958 (−24,9‰) по 2016 (−27,6‰) годы на 2,7‰ (рис. 4). Отмечено, что антропогенные выбросы углерода за последние столетия постепенно обогатили атмосферу легким изотопом углерода (¹²С). Это связано со сжиганием природных углеводородов, которые обеднены ¹³C и, таким образом, придают атмосфере более легкую углеродную подпись [28]. Проявление данного эффекта на биологических объектах свидетельствует об увеличении углеродного следа от хозяйственной деятельности человека на территории Вологодской области с по 1958 по 2016 годы.

 

Рисунок 4 – Корреляция между ẟ¹³C в шерсти ондатры и датой отбора проб

 

Выводы

  1. Соотношение стабильных изотопов углерода (ẟ¹³C) в шерсти представителей отряда Грызуны в Вологодской области варьирует в широких пределах: от −26,1 ± 0,2‰ в шерсти обыкновенного бобра до −19,7 ± 0,2‰ в шерсти обыкновенной белки. Соотношение стабильных изотопов азота (ẟ¹⁵N) в шерсти представителей отряда Грызуны в Вологодской области варьирует от 3,3 ± 0,3‰ в шерсти обыкновенной летяги и азиатского бурундука до 7,4 ± 0,9‰ в шерсти лесной мыши.
  2. Значения ẟ¹³C в шерсти млекопитающих отряда Грызуны выше, а ẟ¹⁵N ниже, чем в шерсти млекопитающих отряда Хищные, исследованных ранее на той же территории.
  3. Шерсть гидробионтов (обыкновенного бобра, водяной крысы и ондатры) менее обогащена тяжелым изотопом углерода и более обогащена тяжелым изотопом азота, чем шерсть наземных представителей отряда Грызуны (обыкновенной белки, обыкновенной летяги и азиатского бурундука).
  4. Среди наземных представителей у грызунов со значительной долей животной пищи в рационе (лесной мыши, белки) шерсть более обогащена тяжелым изотопом азота, по сравнению с шерстью преимущественных фитофагов (азиатского бурундука и обыкновенной летяги).
  5. Перекрытие изотопных ниш у грызунов указывает на конкуренцию за пищевые ресурсы. Отсутствие перекрытия изотопных ниш указывает на эффективное разделение трофических ниш и избежание конкуренции.
  6. Соотношения стабильных изотопов углерода и азота в шерсти бобра, отловленного в районах Вологодской области, различающихся геоморфологическими и природно-климатическими параметрами, статистически значимо не различаются.
  7. Выявлено статистически значимое снижение содержания δ¹³C в шерсти ондатры за 50 лет (с 1958 по 2016 гг.) на 2,7‰, что является следствием внесения легкого ¹²C в экосистемы в результате антропогенной деятельности.
×

Об авторах

Любовь Сергеевна Ельцова

Череповецкий государственный университет

Email: lskhabarova@chsu.ru

научный сотрудник кафедры биологии

Россия

Ольга Васильевна Дурягина

Череповецкий государственный университет

Email: ovduriagina@chsu.ru

студент факультета биологии и здоровья человека

Россия

Людмила Викторовна Кузнецова

Национальный парк «Русский Север»

Email: priroda.russever@mail.ru

начальник отдела организации природопользования и науки

Россия

Елена Сергеевна Иванова

Череповецкий государственный университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: stepinaelena@yandex.ru

кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник, руководитель эколого-аналитической лаборатории кафедры биологии

Россия

Список литературы

  1. McCutchan J.H., Lewis W.M., Kendall С., McGrath C.C. Variation in trophic shift for stable isotope ratios of carbon, nitrogen, and sulfur // Oikos. 2003. Vol. 102, iss. 2. P. 378–390. doi: 10.1034/j.1600-0706.2003.12098.x.
  2. Тиунов А.В. Стабильные изотопы углерода и азота в почвенно-экологических исследованиях // Известия Российской академии наук. Серия биологическая. 2007. № 4. С. 475–489.
  3. Del Rio C.M., Wolf N., Carleton S.A., Gannes L.Z. Isotopic ecology ten years after a call for more laboratory experiments // Biological reviews of the Cambridge Philosophical Society. 2009. Vol. 84, iss. 1. P. 91–111. DOI: 10. 1111/j.1469-185x.2008.00064.x.
  4. Karmanova T.N., Feoktistova N.Y., Tiunov A.V. High δ¹³C values in red squirrels Sciurus vulgaris explained by a reliance on conifer seeds // Isotopes in Environmental and Health Studies. 2023. Vol. 59, iss. 2. P. 180–191. DOI: 10. 1080/10256016.2023.2179045.
  5. Scheu S., Folger M. Single and mixed diets in Collembola: effects on reproduction and stable isotope fractionation // Functional Ecology. 2004. Vol. 18, iss. 1. P. 94–102. doi: 10.1046/j.0269-8463.2004.00807.x.
  6. Neilson R., Boag B., Smith M. Earthworm δ¹³C and δ¹⁵N analyses suggest that putative functional classifications of earthworms are site-specific and may also indicate habitat diversity // Soil Biology and Biochemistry. 2000. Vol. 32, iss. 8–9. P. 1053–1061. doi: 10.1016/s0038-0717(00)00013-4.
  7. McNabb D.M., Halaj J., Wise D.H. Inferring trophic positions of generalist predators and their linkage to the detrital food web in agroecosystems: a stable isotope analysis // Pedobiologia. 2001. Vol. 45, iss. 4. P. 289–297. DOI: 10.1078/ 0031-4056-00087.
  8. Post D.M. Using stable isotopes to estimate trophic position: models, methods, and assumptions // Ecology. 2002. Vol. 83, iss. 3. P. 703–718. doi: 10.1890/0012-9658(2002) 083[0703:usitet]2.0.co;2.
  9. Bluthgen N., Gebauer G., Fiedler K. Disentangling a rainforest food web using stable isotopes: dietary diversity in a species-rich ant community // Oecologia. 2003. Vol. 137, iss. 3. P. 426–435. doi: 10.1007/s00442-003-1347-8.
  10. Halaj J., Peck R.W., Niwa C.G. Trophic structure of a macroarthropod litter food web in managed coniferous forest stands: a stable isotope analysis with δ¹⁵N and δ¹³C // Pedobiologia. 2005. Vol. 49, iss. 2. P. 109–118. DOI: 10. 1016/j.pedobi.2004.09.002.
  11. Koch P.L. Isotopic study of the biology of modern and fossil vertebrates // Stable Isotopes in Ecology and Environmental Science. Second edition / eds. R. Michener, K. Lajtha. 2007. P. 99–154. doi: 10.1002/9780470691854.ch5.
  12. Ben-David M., Flaherty E.A. Stable isotopes in mammalian research: a beginner's guide // Journal of Mammalogy. 2012. Vol. 93, iss. 2. P. 312–328. doi: 10.1644/11-mamm-s-166.1.
  13. Shipley O.N., Matich P. Studying animal niches using bulk stable isotope ratios: an updated synthesis // Oecologia. 2020. Vol. 193, iss. 1. P. 27–51. doi: 10.1007/s00442-020-04654-4.
  14. Rosengren E., Magnell O. Ungulate niche partitioning and behavioural plasticity of aurochs in Early Holocene southern Scandinavia revealed by stable isotope analysis of bone collagen // Palaeogeography, Palaeoclimatology, Palaeoecology. 2024. Vol. 648, iss. 4. doi: 10.1016/j.palaeo.2024. 112257.
  15. Newsome S.D., Del Rio C.M., Bearhop S., Phillips D.L. A niche for isotopic ecology // Frontiers in Ecology and the Environment. 2007. Vol. 5, iss. 8. P. 429–436. DOI: 10.1890/ 060150.1.
  16. Li Y., Shipley B., Price J.N., Dantas V.L., Tamme R., et al. Habitat filtering determines the functional niche occupancy of plant communities worldwide // Journal of Ecology. 2018. Vol. 106, iss. 3. P. 1001–1009. DOI: 10. 1111/1365-2745.12802.
  17. Warsen S.A., Frair J.L., Teece M.A. Isotopic investigation of niche partitioning among native carnivores and the non-native coyote (Canis latrans) // Isotopes in Environmental and Health Studies. 2014. Vol. 50, iss. 3. P. 414–424. doi: 10.1080/10256016.2014.897946.
  18. O'Connell T.C., Hedges R.E.M., Healey M.A., Simpson A.H.R.W. Isotopic comparison of hair, nail and bone: modern analyses // Journal of Archaeological Science. 2001. Vol. 28, iss. 11. P. 1247–1255. doi: 10.1006/jasc.2001.0698.
  19. Eltsova L., Ivanova E., Komov V., Mizgireva I., Kopylov D., Kuznetsova L., Barinova M., Platonova E., Rumiantseva O., Savkova I., Poddubnaya N. Isotope signatures of Carnivorans hair in the North-West of Russia: the role of diet, behavior and metabolism // European Journal of Wildlife Research. 2024. Vol. 70, iss. 5. doi: 10.1007/s10344-024-01851-x.
  20. Ельцова Л.С., Иванова Е.С., Комов В.Т., Мизгирева И.Ю., Кузнецова Л.В., Баринова М.С., Савкова И.С., Платонова Е.В. Изотопная подпись хищных млекопитающих Северо-Запада России // Эволюционные и экологические аспекты изучения живой материи: мат-лы II всерос. науч. конф. с междунар. участием (Череповец, 26–27 октября 2023 г.) / отв. ред. В.В. Петрова. Череповец; Вологда: Сад-огород, 2023. С. 57–61.
  21. Marshall J.D., Brooks J.R., Lajtha K. Sources of variation in the stable isotopic composition of plants // Stable Isotopes in Ecology and Environmental Science. Second edition / eds. R. Michener, K. Lajtha. 2007. P. 22–60. doi: 10.1002/9780470691854.ch2.
  22. Громов И.М., Ербаева М.А. Млекопитающие фауны России и сопредельных территорий. Зайцеобразные и грызуны. СПб., 1995. 522 с.
  23. Fan R., Morozumi T., Maximov T.C., Sugimoto A. Effect of floods on the δ¹³C values in plant leaves: a study of willows in Northeastern Siberia // PeerJ. 2018. DOI: 10. 7717/peerj.5374.
  24. Коновалов А.Ф. Млекопитающие Вологодской области (справочник-определитель): учеб. пособие. Вологда: ВГПУ; Русь, 2005. 160 с.
  25. Виноградов Б.С., Громов И.М. Грызуны фауны СССР. М.–Л.: Изд-во АН СССР, 1952. 298 с.
  26. Cloern J.E., Canuel E.A., Harris D. Stable carbon and nitrogen isotope composition of aquatic and terrestrial plants of the San Francisco Bay estuarine system // Limnology and Oceanography. 2002. Vol. 47, iss. 3. P. 713–729. DOI: 10. 4319/lo.2002.47.3.0713.
  27. Bocherens H., Drucker D. Trophic level isotopic enrichment of carbon and nitrogen in bone collagen: case studies from recent and ancient terrestrial ecosystems // International Journal of Osteoarchaeology. 2003. Vol. 13, iss. 1‐2. P. 46–53. doi: 10.1002/oa.662.
  28. Keeling R.F., Graven H.D., Welp L.R., Resplandy L., Bi J., Piper S.C., Sun Y., Bollenbacher A., Meijer H.A.J. Atmospheric evidence for a global secular increase in carbon isotopic discrimination of land photosynthesis // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2017. Vol. 114, iss. 39. P. 10361–10366. DOI: 10. 1073/pnas.1619240114.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рисунок 1 – Соотношение стабильных изотопов углерода (ẟ¹³C) в шерсти млекопитающих отряда Грызуны. Примечание здесь и далее: a, b, c – различные буквенные индексы, указывающие на наличие различий между видами (критерий Краскела–Уоллиса: p ≤ 0,05)

Скачать (121KB)
3. Рисунок 2 – Соотношение стабильных изотопов азота (ẟ¹⁵N) в шерсти млекопитающих отряда Грызуны

Скачать (116KB)
4. Рисунок 3 – Соотношение стабильных изотопов углерода (ẟ¹³C) и азота (ẟ¹⁵N) в шерсти представителей отряда Грызуны

Скачать (128KB)
5. Рисунок 4 – Корреляция между ẟ¹³C в шерсти ондатры и датой отбора проб

Скачать (171KB)

© Ельцова Л.С., Дурягина О.В., Кузнецова Л.В., Иванова Е.С., 2024

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.