Возможность использования высокоэффективной жидкостной хроматографии для анализа сердечных гликозидов в лекарственных средствах ландыша (обзор)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Введение. В настоящее время стандартизация лекарственного растительного сырья ландыша, содержащего сердечные гликозиды группы карденолидов, предполагает использование биологических методов или спектрофотометрического метода. В связи с необходимостью изучить возможность отказа от испытаний на животных актуальным является выбор селективного и чувствительного физико-химического метода анализа сердечных гликозидов ландыша.

Цель. На основании сравнительного анализа данных научной литературы провести выбор подходящего физико-химического метода определения сердечных гликозидов группы карденолидов.

Обсуждение. Проведен анализ методов идентификации и количественного определения карденолидов. Показано, что биологический метод анализа характерзуется достаточной точностью и воспроизводимостью, необходимыми для стандартизации лекарственного растительного сырья и препаратов из него. Метод спектрофотометрии недостаточно специфичен, а метод тонкослойной хроматографии пригоден в основном для идентификации карденолидов. Представлены результаты сравнительного анализа хроматографических условий, используемых для анализа карденолидов методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) с применением различных видов детекторов. Показано, что использование ВЭЖХ-методики может заменить биологические или неселективные методы при анализе сердечных гликозидов в препаратах ландыша. В качестве основы для разработки методики анализа карденолидов может быть рекомендован обращенно-фазовый вариант ВЭЖХ с октадецилсилильным сорбентом (С18), в качестве подвижной фазы — смесь растворителей вода, ацетонитрил и (или) метанол в различных соотношениях, диодно-матричный детектор при длине волны 220 ± 2 нм.

Выводы. Проведенный анализ позволил выявить перспективный для дальнейшего изучения и экспериментальной проверки метод, позволяющий идентифицировать и количественно определять сердечные гликозиды в лекарственном растительном сырье ландыша и лекарственных средствах на его основе. Метод ВЭЖХ подходит для рутинного применения и позволит заменить биологические или недостаточно селективные методы при анализе сердечных гликозидов ландыша.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Анастасия Викторовна Бекетова

Федеральное государственное бюджетное учреждение «Научный центр экспертизы средств медицинского применения» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Автор, ответственный за переписку.
Email: beketova@expmed.ru
ORCID iD: 0000-0001-6975-516X

канд. фарм. наук

Россия, 127051, г. Москва, Петровский б-р, д. 8, стр. 2

Ольга Владимировна Евдокимова

Федеральное государственное бюджетное учреждение «Научный центр экспертизы средств медицинского применения» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: beketova@expmed.ru
ORCID iD: 0000-0003-2191-1033

д-р фарм. наук, доцент

Россия, 127051, г. Москва, Петровский б-р, д. 8, стр. 2

Татьяна Борисовна Шемерянкина

Федеральное государственное бюджетное учреждение «Научный центр экспертизы средств медицинского применения» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: beketova@expmed.ru
ORCID iD: 0000-0003-3720-9687

канд. фарм. наук

Россия, 127051, г. Москва, Петровский б-р, д. 8, стр. 2

Валерия Леонидовна Багирова

Федеральное государственное бюджетное учреждение «Научный центр экспертизы средств медицинского применения» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: beketova@expmed.ru
ORCID iD: 0000-0003-0379-6158

д-р фарм. наук, профессор

Россия, 127051, г. Москва, Петровский б-р, д. 8, стр. 2

Список литературы

  1. Доронина Д. А. Перспективы изучения биологически активных веществ Ландыша майского Convallaria mayalis L. // От биохимии растений к биохимии человека. М.; 2022. С. 281–287. https://doi.org/10.52101/9785870191041_281].
  2. Schrutka-Rechtenstamm R., Kopp B. Origin of cardenolides in rhizomes and roots of Convallaria majalis L. Biogenesis in situ or transport from leaves // Z. Naturforsch C. 2014. V. 40. N 9. P. 627–630. https://doi.org/10.1515/znc-1985-9-1007
  3. Платонов В. В., Волочаева М. В., Хадарцев А. А., Мелякова Д. А., Сухих Г. Т., Дунаева И. В. Химический состав этанольного экстракта Ландыша майского (Сonvallaria majalis L., семейство лилейных) // Вестн. новых мед. технологий. 2019. Т. 26. № 2. С. 53–60. https://doi.org/10.24411/1609-2163-2019-16356].
  4. Круглов Д. С., Кошкарева К. Е. Количественное определение конваллятоксина в растительном сырье, содержащем кардиостероиды, методом фотометрии // Сиб. мед. вестн. 2019. Т. 4. С. 34–37. https://www.elibrary.ru/lhxxyu
  5. Евдокимова О. В., Бекетова А. В., Наумова О. А., Клинкова И. В., Шемерянкина Т. Б., Ладыгина Л. А., Бущик К. С. Современные физико-химические методы анализа сердечных гликозидов // Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. Регуляторные исследования и экспертиза лекарственных средств. 2023. Т. 13. № 4. С. 567–577. https://doi.org/10.30895/1991-2919-2023-13-4-567-577
  6. Орынбекова С. О., Келеке А. С., Сакипова З. Б., Ибрагимова Л. Н., Сермухомедова О. В., Нургожин Т. С. Сравнительная оценка методик идентификации сердечных гликозидов в лекарственном растительном сырье // Вестн. КазНМУ. 2019. № 2. С. 396–400.
  7. Зибарева Л. Н. Изопреноиды — вторичные метаболиты растений. Томск: Изд-во Том. гос. ун-та; 2022.
  8. Harkiss K. J., Linley P. A., Mesbah K. M. Analysis of cardenolides of Convallaria majalis by hight pressure liquid chromatography // J. High Resol. Chromatogr. 1981. V. 4. N 1. P. 37–38. https://doi.org/10.1002/jhrc.1240040110
  9. Züst T., Petschenka G., Hastings A. P., Agrawal A. A. Toxicity of milkweed leaves and latex: Chromatographic quantification versus biological activity of cardenolides in 16 Asclepias species // J. Chem. Ecol. 2019. V. 45. N 1. P. 50–60. https://doi.org/10.1007/s10886-018-1040-3
  10. Ghanem S. A., Aboul-Enein A. M., El-Sawy A., Rady M. R., Ibrahem Mona M. In vitro propagation and cardiac glycosides content of Digitalis lanata // Int. J. Acad. Res. 2010. V. 2. N 6. P. 348356.
  11. Pokharel P., Sippel M., Vilcinskas A., Petschenka G. Defense of milkweed bugs (Heteroptera: Lygaeinae) against predatory lacewing larvae depends on structural differences of sequestered cardenolides. Insects. 2020. V. 11. N 8. ID 485. https://doi.org/10.3390/insects11080485
  12. Agrawal P., Akhade M., Laddha K., Narkhede S., Mirgal A., Salunke C. Quantification of convallatoxin in Antiaris toxicaria Leusch seeds by RP-HPLC // Anal. Chem. Lett. 2014. V. 4. N 3. P. 172–177. https://doi.org/10.1080/22297928.2014.925821
  13. Agrawal A. A., Ali А., Johnson M. D., Hastings A. P., Burge D., Weber M. G. Toxicity of the spiny thick-foot Pachypodium // Am. J. Bot. 2018. V. 105. N 4. P. 677–686. https://doi.org/10.1002/ajb2.1057
  14. Pellati F., Bruni R., Bellardi M. G., Bertaccini A., Benvenuti S. Optimization and validation of a high-performance liquid chromatography method for the analysis of cardiac glycosides in Digitalis lanata // J. Chromatogr. A. 2009. V. 1216. N 15. P. 3260–3269. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2009.02.042
  15. Butt A. N., Tennant B. P., Gillingwater S. D., Shepherd P. S., Swaminathan R. Binding of ouabain and human ouabainlike substance to different Na+, K+-ATPase isoforms // Hypertens Res. 2000. N 23. P. 45–50. https://doi.org/10.1291/hypres.23.supplement_s45
  16. Sener B., Evren N., Ozguven M. Determination of some cardiac glycosides by high-performance liquid chromatography // J. Ethnopharmacol. 1988. V. 23. N 2–3. P. 188–190. https://doi.org/10.1016/0378-8741(88)90091-8
  17. Ikeda Y., Fujii Y., Nakaya I., Yamazaki M. Quantitative HPLC analysis of cardiac glycosides in Digitalis purpurea leaves // J. Nat. Prod. 1995. V. 58. N 6. P. 897–901. https://doi.org/10.1021/np50120a012
  18. Kwon H.-J., Sim H.-J., Lee S., Lee Y.-M., Park Y.-D., Hong S.-P. HPLC method validation for Digitalis and its analogue by pulsed amperometric detection // J. Pharm. Biomed. Anal. 2011. T. 54. N 1. P. 217–221. https://doi.org/10.1016/j.jpba.2010.07.037
  19. Shimada K., Oe T., Kanno C., Nambara T. Utility liquid of cyclodextrin in chromatographic mobile phase for high performance separation of cardenolides // Anal. Sci. 1988. V. 4. P. 377–80. https://doi.org/10.2116/analsci.4.377
  20. Томилова С. В., Кочкин Д. В., Тюрина Т. М., Глаголева Е. С., Лабунская Е. А., Галишев Б. А., Носов А. М. Особенности роста и синтеза вторичных метаболитов в культурах in vitro Digitalis lanata Ehrh // Физиология растений. 2022. Т. 69. № 2. С. 149–160. https://doi.org/10.31857/S0015330322020208

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. (I)

Скачать (28KB)
3. (II)

Скачать (59KB)

© Российская академия наук, 2024