Подходы к подготовке проб сложных биологических матриц при судебно-химическом определении карфентанила

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Сравниваются две процедуры пробоподготовки (жидкостная экстракция в неполярный растворитель и твердофазная экстракция) биологических тканей трупа, измененных гниением. Работа посвящена созданию экспрессного и простого способа пробоподготовки при определении карфентанила в образцах гнилостной ткани. ГХ-МС-анализ проводили на хроматографе с масс-селективным детектором Agilent 7820/5975 Маэстро (Rxi-5ms, Restek). Для ВЭЖХ-МС/МС-анализа использовали трехквадрупольный масс-спектрометрический детектор (LC-MS/MS Shimadzu 8050). Хроматографическое разделение осуществляли на колонке с обращенно-фазовым сорбентом Phenomenex Kinetex С18. В качестве объекта исследования выбрали гомогенаты печени, а в качестве альтернативы – продукты лизиса, полученные замораживанием/размораживанием образцов тканей печени. Пробоподготовку гомогенатов проводили методами жидкостной экстракцией гептаном и твердофазной экстракции. Сравнение результатов показало, что жидкости, содержащие продукты лизиса, являются оптимальным выбором для быстрой и эффективной пробоподготовки. При этом аналитический сигнал целевых веществ в 1.5–2 раза выше сигнала, полученного при исследовании гомогенатов тканей, при использовании как твердофазной, так и жидкостной экстракции.

Об авторах

М. Ш. Айгумов

Ноябрьский психоневрологический диспансер

Автор, ответственный за переписку.
Email: aygumov.m@yandex.ru
Россия, просп. Мира, 37Б, Ноябрьск, 629806

С. А. Савчук

Ассоциация специалистов по химико-токсикологическому и судебно-химическому анализу; Институт физической химии и электрохимии им. А.Н. Фрумкина РАН

Email: aygumov.m@yandex.ru
Россия, просп. Науки, 17, кор. 6, лит. А, пом. 95H, Санкт-Петербург, 195220; Ленинский просп., 31, корп. 4, Москва, 119071

Список литературы

  1. Leen J.L.S., Juurlink D.N. Carfentanil: A narrative review of its pharmacology and public health concerns // Can. J. Anaesth. 2019. V. 66. № 4. P. 414.
  2. Kreeger T.J., Arnemo J., Raath J.P. Handbook of Wildlife Chemical Immobilization, Int. Ed. Fort Collins: Wildlife Pharmaceuticals, 1999. С. 36.
  3. Stanley T. H., Egan T. D., Van Aken H. A Tribute to Dr. Paul A. J. Janssen: Entrepreneur Extraordinaire, Innovative Scientist, and Significant Contributor to Anesthesiology // Anesth. Analg. (Philadelphia, PA, U. S.). 2008. V. 106. № 2. P. 451.
  4. Lust E.B., Barthold C., Malesker M.A., Wichman T.O. Human health hazards of veterinary medications: Information for emergency departments // J. Emerg. Med. 2011. V. 40. № 2. P. 198.
  5. George A.V., Lu J.J., Pisano M.V., Metz J., Erickson T.B. Carfentanil – An ultra potent opioid // Am. J. Emerg. Med. 2010. V. 28. № 4. P. 530.
  6. Charlotte D., English L., Stewart C., Edgington M., Mcveigh J., Bellis M. Annual Report to the European Monitoring Centre for Drugs and Drug Addiction (EMCDDA) 2012 Edition. Liverpool: Liverpool John Moores University, 2013. С. 47.
  7. Мелентьев А. Б., Катаев С. С., Дворская О. Н. Дизайнерские наркотики. Метаболизм и подходы к анализу в биологических средах Москва: Изд-во “Перо”, 2016. 326 с.
  8. United Nations Office on Drugs and Crime “Recommended Methods for The Identification and Analysis of Fentanyl and Its Analogues in Biological Specimens, Manual for Use by National Drug Analysis Laboratories”. Vienna: United Nations, 2018. 69 c.
  9. Hikin L., Smith P.R., Ringland E., Hudson S., Morley S.R. Multiple fatalities in the North of England associated with synthetic fentanyl analogue exposure: Detection and quantitation a case series from early 2017// Forensic Sci. Int. 2018. V. 282. P. 179.
  10. Swanson D.M., Hair L.S., Strauch Rivers S.R., Smyth B.C., Brogan S.C., Ventoso A.D. et al. Fatalities involving carfentanil and furanyl fentanyl: Two case reports // J. Anal. Toxicol. 2017. V. 41. № 6. P. 498.
  11. Concheiro M., Chesser R., Pardi J., Cooper G. Postmortem toxicology of new synthetic opioids // Front. Pharmacol. 2018. V. 9. P. 1210.
  12. Shoff E.N., Zaney M.E., Kahl J.H., Hime G.W., Boland D.M. Qualitative identification of fentanyl analogs and other opioids in postmortem cases by UHPLC-ion trap-MSn // J. Anal. Toxicol. 2017. V. 41. № 6. P. 484.
  13. Marchei E., Pacifici R., Mannocchi G., Marinelli E., Busardò F.P., Pichini S. New synthetic opioids in biological and non-biological matrices: A review of current analytical methods // TrAC, Trends Anal. Chem. 2018. V. 102. P. 1.
  14. Wang L., Bernert J.T. Analysis of 13 fentanils, including sufentanil and carfentanil, in human urine by liquid chromatography-atmospheric-pressure ionization-tandem mass spectrometry// J. Anal. Toxicol. 2006. V. 30. № 5. P. 335.
  15. Shoff E.N., Zaney M.E., Kahl J.H., Hime G.W., Boland D.M. Qualitative identification of fentanyl analogs and other opioids in postmortem cases by UHPLC-ion trap-MSn// J. Anal. Toxicol. 2017. V. 41. № 6. P. 484.
  16. Sofalvi S., Schueler H.E., Lavins E.S., Kaspar C.K., Brooker I.T., Mazzola C.D. et al. An LC–MS-MS method for the analysis of carfentanil, 3-methylfentanyl, 2-furanyl fentanyl, acetyl fentanyl, fentanyl and norfentanyl in postmortem and impaired-driving cases // J. Anal. Toxicol. 2017. V. 41. № 6. P. 473.
  17. Papsun D., Isenschmid D., Logan B.K. Observed carfentanil concentrations in 355 blood specimens from forensic investigations // J. Anal. Toxicol. 2017. V. 41. № 9. P. 777.
  18. Савчук С.А., Григорьев А.М. Судебно-химическое исследование волос, ногтевых срезов, крови, мочи, органов и тканей трупа на наличие психоактивных веществ, включая метаболиты/маркеры синтетических каннабимиметиков методом газовой хроматографии с масс-селективным детектированием. Москва: РЦСМЭ МЗ РФ, 2019. 42 с.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2025