Samara Journal of ScienceSamara Journal of Science2309-43702782-3016Samara State University of Social Sciences and Education2185610.17816/snv201874114Research ArticleRooting of <i>Vaccinium corymbosum</i> L. microshoots cv. «Blue-Berry» in culture <i>in vitro</i> and <i>ex vitro</i>MohamedGamil Abuo El-Dis<p>postgraduate student of Botany and Plant Physiology Department</p>gamil.rayan306@gmail.comKhusnetdinovaLandysh Zavdetovna<p>candidate of biological sciences, associate professor of Botany and Plant Physiology Department</p>husnetdinova.l@mail.ruTimofeevaOlga Arnoldovna<p>doctor of biological sciences, professor of Botany and Plant Physiology Department</p>olga.timofeeva@kpfu.ruKazan (Volga Region) Federal University3011201874808410032020Copyright © 2018, Mohamed G.E., Khusnetdinova L.Z., Timofeeva O.A.2018<p>This paper discusses a method of micropropagation of <em>Vaccinium corymbosum</em> L. cv. Blue-Berry. The results showed that WPM supplemented with 1,0 mg/l of zeatin in combination with 0,1 mg/l of indolyl-3-butyric acid was more effective for the multiplication of blueberry axillary shoots. The maximum increase in the number of healthy axillary shoots was observed in the fourth subculture, whereas the phenomenon of hyperhydration (vitrification) began to appear in the fifth subculture. In addition, it was established that the presence of indolyl-3-butyric acid and 1,0 g/l of activated charcoal in the nutrient medium lead to the development of good root system of the <em>Vaccinium corymbosum</em> cv. Blue-Berry. The highest mean number of roots formed per explant was obtained on WPM medium, supplemented with 0,5 mg/l indolyl-3-butyric acid after 10 weeks. Acclimatization of <em>in vitro</em> regenerated plantlets of <em>Vaccinium corymbosum </em>with a developed root system in <em>ex-vitro</em> conditions (pH 3,54) showed a 100% survival rate.</p>Vaccinium corymbosum L.highbush blueberryregenerated plantletsin vitroex vitroexplantnodal segmentsWPM mediumapical meristemmicropropagationBlue-Berry varietyadaptationrhizogenesisrootingbiological resourcesVaccinium corymbosum L.голубика высокорослаярастения-регенерантыin vitroex vitroэксплантсегменты стеблясреда WPMапикальные части стеблямикроклональное размножениесорт Блю Берриадаптацияризогенезукоренениебиологические ресурсы[Mainland C., Tucker J. Blueberry health information-some new mostly review // VII International Symposium on Vaccinium Culture. 2000. P. 39-43.][Zu X.Y., Zhang Z.Y., Zhang X.W., Yoshioka M., Yang Y.-N., Li J. Anthocyanins extracted from Chinese blueberry (Vaccinium uliginosum L.) and its anticancer effects on DLD-1 and COLO205 cells // Chinese Medical Journal. 2010. Vol. 123. P. 2714-2719.][Matchett M.D., Mackinnon S.L., Sweeney M.I., Gottchall-Pass K.T., Hurta R.A. Blueberry flavonoids inhibit matrix metalloproteinase activity in DU145 human prostate cancer cells // Biochemistry and Cell Biology. 2005. Vol. 83. P. 637-643.][Пинчукова Ю., Масанский С. Пищевая ценность плодов голубики // Голубиководство в Беларуси: итоги и перспективы: мат-лы респ. науч.-практ. конф., 2012. С. 45-48.][Эрст А., Вечернина Н. Микроразмножение новых перспективных сортов Vaccinium uliginosum L. // Вісник Харківського національного аграрного університету. Серія: Біологія. 2010. С. 96-103.][Busby A.L., Himelrick D.G. Propagation of blackberries (Rubus spp.) by stem cuttings using various IBA formulations // VII International Symposium on Rubus and Ribes. 1998. P. 327-332.][Сидороич Е., Кутас Е. Клональное микроразмножение интродуцированных сортов голубики высокой и брусники обыкновенной в культуре in vitro в связи с генотипами // Вести АН Беларуси. Сер. «Биол. науки». Минск, 1998. С. 5-9.][Попович Е., Филипеня В. Влияние экзогенного цитокинина на жизнеспособность эксплантов голубики высокой in vitro // Физиология растений. 1997. С. 104-107.][Волотович А. Результаты деятельности НИЛ клеточных технологий в растениеводстве УО «Полесский государственный университет» как модель развития прикладной биотехнологии на базе вуза. 2011. С. 286-288.][Тихомирова Л. Получение стерильной активно пролиферирующей культуры ириса в условиях in vitro // Достижения науки и техники АПК. 2010. № 8. С. 37-39.][Lloyd G., Mccown B. Commercially-feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot-tip culture. Combined Proceedings of the International Plant Propagator’s Society. 1980. Vol. 30. P. 421-427.][Cuce M., Bektas E., Sormen A. Micropropagation of Vaccinium arctostaphylos L. via lateral-bud culture // Turkish Journal of Agriculture and Forestry. 2013. Vol. 37 (1). P. 40-44.][Cuce M., Sormen A. Micropropagation of Vaccinium myrtillus L. (Bilberry) naturally growing in the Turkish flora // Turkish Journal of Biology. 2015. Vol. 39 (2). P. 233-240.][Cuce M., Sormen A. In vitro production protocol of Vaccinium uliginosum L. (bog bilberry) growing in the Turkish flora // Turkish Journal of Agriculture and Forestry. 2017. Vol. 41 (4). P. 294-304.][Вечукнина Н.А., Таварткиладзе О.К., Эрст А.А., Горбунов А.Б. Ускоренное размножение голубики топяной in vitro // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2008. № 6 (44). С. 21-25.][Cohen D. Application of micropropagation methods for blueberries and tamarillos // Application of micropropagation methods for blueberries and tamarillos. 1980. Vol. 30. P. 144-146.][Вечукнина А. Методы биотехнологии в селекции, размножении и сохранении генофонда растений // Бюллетень Ботанического сада-института ДВО РАН. 2004. № 12. С. 22-30.][Meiners J., Schwab M., Szankowski I. Efficient in vitro regeneration systems for Vaccinium species // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2007. Vol. 89. P. 169-176.][Емельянова Е.П. Влияние ауксинов на укоренение in vitro сортов Vaccinium uliginosum L. // Известия Алтайского государственного университета. 2010. С. 25-28.][Сидорович Е.А., Кутас Е.Н. Клональное микроразмножение новых плодово-ягодных растений. Минск: Навука i тэхнiка. 1996. 246 с.]