Journal of IchthyologyJournal of IchthyologyВопросы ихтиологии0042-87523034-5146The Russian Academy of Sciences70040710.7868/S3034514625050099ArticlesСтатьиResearch ArticleHISTOLOGICAL STRUCTURE OF LIVER, TRUNK KIDNEY AND SPLEEN OF THE ALTAI OSMAN OREOLEUCISCUS POTANINI (CYPRINIDAE) FROM THE ISOLATED POPULATION OF LAKE KIDELYU (ALTAI REPUBLIC, RUSSIA)ГИСТОЛОГИЧЕСКАЯ СТРУКТУРА ПЕЧЕНИ, ТУЛОВИЩНОЙ ПОЧКИ И СЕЛЕЗЁНКИ АЛТАЙСКОГО ОСМАНА ПОТАНИНА OREOLEUCISCUS POTANINI (LEUCISCIDAE) ИЗ ИЗОЛИРОВАННОЙ ПОПУЛЯЦИИ OЗЕРА КИДЕЛЮ (РЕСПУБЛИКА АЛТАЙ)KochetkovN. IКочетковН. Иsamatrixs@gmail.comNikiforov-NikishinD. LНикифоров-НикишинД. Л-RomanenkoG. AРоманенкоГ. А

Altai Branch

Алтайский филиал

-ElizarievD. GЕлизарьевД. Г

Altai Branch

Алтайский филиал

-CherenkovO. AЧеренковО. А

Altai Branch

Алтайский филиал

-KlimovV. AКлимовВ. А-GavrilinK. VГаврилинК. В-Moscow State University of Technology and ManagementМосковский государственный университет технологий и управленияRussian Federal Research Institute of Fisheries and OceanographyВсероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии — АлтайНИРОNational Fund for Environmental Protection and Development of the Far North and Similar Areas “Yakutia”Национальный фонд экологической защиты и развития Крайнего Севера и приравненных к ним местностей “Якутия”15102025655VOL 65, NO5 (2025)ТОМ 65, №5 (2025)62563908012026Copyright ©; 2025, Russian Academy of SciencesCopyright ©; 2025, Российская академия наук2025Russian Academy of SciencesРоссийская академия наукhttps://snv63.ru/0042-8752/article/view/700407

For the first time, histological structure and morphometric indices of the liver, trunk kidney and spleen of the Altai osman Oreoleuciscus potanini (Kessler, 1879) are presented. The liver parenchyma has hepatocyte-sinusoidal cord-shaped structure. The biliary structures are presented by isolated and biliary-venous. The sections of the nephron of the trunk kidney (proximal and distal tubules) and collecting tubules were morphologically clearly distinguished by the area of the nucleus and the height of the epithelium, the development of the brush border (limbus strigillatus) and the thickness of the basal membrane. The spleen structure is presented by connective tissue trabeculae representing the organ stroma. Fuzzy boundaries are noticeable between the red and white pulp, the volume fraction of the white pulp (55.98%) is higher than that of the red pulp (37.82%). Pathological changes in the liver (inflammation near the bile ducts, foci of vacuolization, expansion of the liver sinusoids, foci of cells with signs of pycnosis) were insignificant, both by distribution and degree of development. In the kidneys of some individuals, localized foci of inflammation and degradation of the renal tubules were detected. In the future, the described morphological features of the histological structure of the liver, trunk kidney and spleen of the Altai osman will allow to conduct monitoring studies aimed at assessing the state of populations of endemic fish species in the reservoirs of the Altai Mountains, and to deepen the understanding of the morphology and histology of carp-like fish (Cypriniformes).

Впервые приведены данные о гистологической структуре и морфометрических показателях печени, туловищной почки и селезёнки алтайского османа Потанина Oreoleuciscus potanini (Kessler, 1879). Паренхима печени османа организована в виде гепатоцито-синусоидальных структур шнуровидной формы. Из билиарных структур в ткани органа выявлены изолированная и билиарно-венозная. Отделы нефрона туловищной почки (проксимальный и дистальный канальцы) и собирательные трубочки морфологически отчётливо различались по площади ядра и высоте эпителия, развитию щёточной каёмки и толщине базальной мембраны. Селезёнка организована в виде соединительнотканных трабекул, представляющих строку органа. Между красной и белой пульпой заметны нечёткие границы, при этом объёмная доля белой пульпы (55.98%) выше доли красной (37.82%). Патологические изменения в печени (воспаление вблизи жёлчных протоков, очаги вакуолизации, расширение синусоидов печени, очаги клеток с признаками пикноза) имели небольшие распространение и выраженность. В почках у некоторых особей выявлены локализованные очаги воспаления и деградации почечных канальцев. Описанные морфологические особенности гистологической структуры печени, туловищной почки и селезёнки османа позволят в будущем проводить мониторинговые исследования, нацеленные на оценку состояния популяций эндемичных видов рыб водоёмов Горного Алтая, а также углубляют понимание морфологии и гистологии карпообразных (Cypriniformes).

endemic speciesmorphologymorphometryhistopathologyCypriniformesAltai Republicэндемичные видыморфологияморфометриягистопатологиякарпообразныеCypriniformesРеспублика АлтайРабота финансировалась за счёт средств бюджета Московского государственного университета технологий и управления.Автандилов Г.Г. 2002. Основы количественной патологической анатомии: учебное пособие. М.: Медицина, 240 с.Батишева Н.М., Картавцев Ю.Ф., Богуцкая Н.Г. 2011. Филогенетический анализ алтайских османов рода Oreoleuciscus (Pisces, Cyprinidae, Leuciscinae), основанный на исследовании нуклеотидных последовательностей гена цитохромоксидазы 1 (Co-I) // Генетика. Т. 47. № 10. С. 1335–1345.Голубцов А.С., Малков Н.П. 2007. Очерк ихтиофауны Республики Алтай: систематическое разнообразие, распространение и охрана. М.: Т-во науч. изд. КМК, 164 с.Дгебуадзе Ю.Ю., Мина М.В., Мироновский А.Н. 2008. К оценке фенетических отношений алтайских османов (Oreoleuciscus, Cyprinidae) из трёх озёр Монголии по признакам черепа // Вопр. ихтиологии. Т. 48. № 3. С. 315–323.Дгебуадзе Ю.Ю., Мироновский А.Н., Мэндсайхан Б., Слынько Ю.В. 2017. Первый случай морфологической дифференциации алтайского османа Потанина Oreoleuciscus potanini (Cyprinidae, Actinopterigii) в реке // Докл. РАН. Т. 473. С. 250–253. https://doi.org/10.7868/S0869565217080266Дгебуадзе Ю.Ю., Мироновский А.Н., Мэндсайхан Б., Слынько Ю.В. 2020. Быстрая морфологическая диверсификация карповой рыбы Oreoleuciscus potanini (Cyprinidae) при образовании водохранилища на реке семиаридной зоны // Докл. РАН. Науки о жизни. Т. 490. № 1. С. 85–89. https://doi.org/10.31857/S2686738920010060Ермоленко А.В., Беспрозванных В.В. 1987. О патогенном влиянии некоторых метацеркарий трематод на пресноводных рыб юга Дальнего Востока // Паразитология. Т. 21. № 2. С. 159–162.Кочетков Н.И., Никифоров-Никишин Д.Л., Смородинская С.В. и др. 2024. Положительный опыт применения штамма Lactobacillus brevis 47f на рыбоводно-биологические, гематологические и гистологические показатели молоди стерляди (Acipenser ruthenus) // Рыб. хоз-во. № 4. С. 96–107. https://doi.org/10.36038/0131-6184-2024-4-96-107Мироновский А.Н., Слынько Е.Е. 2023. Сравнительный анализ структуры морфологического разнообразия алтайских османов рода Oreoleuciscus (Cyprinidae) популяций рек трёх водных систем Монголии // Вопр. ихтиологии. Т. 63. № 3. С. 274–281. https://doi.org/10.31857/S0042875223030128Мироновский А.Н., Касьянов А.Н., Слынько Ю.В., Дгебуадзе Ю.Ю. 2014. Фенетические отношения и многомерные онтогенетические каналы экологических форм алтайского османа Oreoleuciscus potanini (Cyprinidae) озера Ногон (Котловина Больших Озёр, Монголия) // Вопр. ихтиологии. Т. 54. № 1. С. 25–31. https://doi.org/10.7868/S0042875214010081Мироновский А.Н., Слынько Ю.В., Касьянов А.Н., Горошкова Т.В. 2018. Сравнительный анализ изменчивости экологических форм алтайского османа Oreoleuciscus potanini (Cyprinidae) в озерах Айраг, Хяргас и Ногон (Западная Монголия) // Экология. № 3. С. 214–219. https://doi.org/10.7868/S036705971803006XМироновский А.Н., Маврин А.С., Кожара А.В., Слынько Ю.В. 2019. Фактор солености в микроэволюции рыб и распределение возрастных групп алтайского османа Oreoleuciscus potanini (Cyprinidae) в озерах Айраг и Хяргас (Монголия) // Экология. № 3. С. 233–235. https://doi.org/10.1134/S0367059719030107Никифоров-Никишин А.Л., Никифоров-Никишин Д.Л., Кочетков Н.И. 2023. Состояние изолированных популяций пеляди Coregonus peled горных озер Алтая по гистологическим показателям и элементному составу хрусталика глаза // Биология внутр. вод. № 4. С. 527–540. https://doi.org/10.31857/S0320965223040186Попов П.А. 2013. О характере распределения рыб на территории Горного Алтая // Вестн. ТГУ. Биология. № 2 (22). С. 141–149.Правдин Н.Ф. 1966. Руководство по изучению рыб (преимущественно пресноводных). М.: Пищ. пром-сть, 376 с.Пронина С.В., Батуева М.Д.-Д., Пронин Н.М. 2014. Характеристика меланомакрофаговых центров печени и селезёнки плотвы Rutilus rutilus (Cypriniformes: Cyprinidae) в озере Котокельское в период вспышки гаффской болезни // Вопр. ихтиологии. Т. 54. № 1. С. 107–114. https://doi.org/10.7868/S004287521401010XРуководство по изучению питания рыб в естественных условиях. 1961. М.: Изд-во АН СССР, 264 с.Шуман Л.А., Селюков А.Г., Некрасов И.С., Кыров Д.Н. 2019. Гистопатологии и изменения репродуктивных показателей у пеляди Coregonus peled из бассейна Нижней Оби // Экология. № 4. С. 297–308. https://doi.org/10.1134/S0367059719040140Agius C., Roberts R.J. 2003. Melano-macrophage centres and their role in fish pathology // J. Fish Dis. V. 26. № 9. P. 499–509. https://doi.org/10.1046/j.1365-2761.2003.00485.xAkiyoshi H., Inoue A. 2004. Comparative histological study of teleost livers in relation to phylogeny // Zool. Sci. V. 21. № 8. P. 841–850. https://doi.org/10.2108/zsj.21.841Alves A.P.C., Pereira R.T., Rosa P.V. 2021. Morphology of the digestive system in carnivorous freshwater dourado Salminus brasiliensis // J. Fish Biol. V. 99. № 4. P. 1222–1235. https://doi.org/10.1111/jfb.14821Bankhead P., Loughrey M.B., Fernández J.A. et al. 2017. QuPath: open source software for digital pathology image analysis // Sci. Rep. V. 7. Article 16878. https://doi.org/10.1038/s41598-017-17204-5Bjørgen H., Koppang E.O. 2022. Anatomy of teleost fish immune structures and organs // Principles of fish immunology. Cham: Springer. P. 1–30. https://doi.org/10.1007/978-3-030-85420-1_1Bogutskaya N. 2001. A revision of Altai osmans of the genus Oreoleuciscus (Leuciscinae, Cyprinidae) with a description of a new species, O. angusticephalus, from River Kobdo (Hovd) system, West Mongolia // Proc. Zool. Inst. RAS. V. 287. P. 5–43.Bruslé J., Anadon G.G. 1996. The structure and function of fish liver // Fish morphology. London: Routledge. P. 77–93. https://doi.org/10.1201/9780203755990-6Da Cunha R.L.D., de Brito-Gitirana L. 2020. Effects of titanium dioxide nanoparticles on the intestine, liver, and kidney of Danio rerio // Ecotoxicol. Environ. Saf. V. 203. Article 111032. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2020.111032El-Khayat H.M.M., Abd-Elkawy S., Abou-Ouf N.A. et al. 2018. Biochemical and histological assessment of some heavy metals on Biomphalaria alexandrina snails and Oreochromis niloticus fish in Lake Burullus, Egypt // Egypt. J. Aquat. Biol. Fish. V. 22. № 3. P. 159–182. https://doi.org/10.21608/ejabf.2018.9737Flerova E.A., Yurchenko V.V., Sapozhnikova Y.P. et al. 2022. Microanatomy and ultrastructure of kidney interstitial cells and nephron in brown trout (Salmo trutta) at different stages of the life cycle // Can. J. Zool. V. 100. № 3. P. 219–232. https://doi.org/10.1139/cjz-2021-0167Gashkina N.A., Moiseenko T.I., Shuman L.A., Koroleva I.M. 2022. Biological responses of whitefish (Coregonus lavaretus L.) to reduced toxic impact: metal accumulation, haematological, immunological, and histopathological alterations // Ecotoxicol. Environ. Saf. V. 239. Article 113659. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2022.113659Golubtsov A.S., Berendzen P.B., Annett C.A. 1999. Morphological variation and taxonomic status of Altai osmans, Oreoleuciscus, from the upper reaches of the Ob River system // J. Fish Biol. V. 54. № 4. P. 878–899. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.1999.tb02039.xHe Y., Wang E., Wang K. et al. 2021. Morphology of the spleen in Oreochromis niloticus: splenic subregions and the blood-spleen barrier // Animals. V. 11. № 10. Article 2934. https://doi.org/10.3390/ani11102934Horalskyi L.P., Demus N.V., Sokalskyi I.M. et al. 2023. Species specifics of morphology of the liver of the fishes of the Cyprinidae family // Regul. Mech. Biosyst. V. 14. № 2. P. 234–241. https://doi.org/10.15421/022335Kaptaner B., Aykut H., Doğan E., Bastanci M. 2021. Histology of some major immune system organs in Lake Van fish Alburnus tarichi (Güldenstädt, 1814) (Cyprinidae) // Anat. Histol. Embryol. V. 50. № 5. P. 770–780. https://doi.org/10.1111/ahe.12723Lebedeva D.I., Mendsaykham B., Yakovleva G.A., Zaitsev D.O. 2020. Parasites of Oreoleuciscus potanini (Cyprinidae) from lakes of Khart Us Nuur National Park (Mongolia) // Nat. Conserv. Res. V. 5. Suppl. 2. P. 57–71. https://doi.org/10.24189/ncr.2020.042Mokhtar D.M. 2018. Cellular and stromal elements organization in the liver of grasscarp, Ctenopharyngodon idella (Cypriniformes: Cyprinidae) // Micron. V. 112. P. 1–14. https://doi.org/10.1016/j.micron.2018.06.006Mokhtar D.M. 2021. Fish histology: from cells to organs. N.Y.: Apple Acad. Press, 442 p. https://doi.org/10.1201/9781003097419Nunes C., Silva A., Soares E., Ganias K. 2011. The use of hepatic and somatic indices and histological information to characterize the reproductive dynamics of Atlantic sardine Sardina pilchardus from the Portuguese coast // Mar. Coast. Fish. V. 3. № 1. P. 127–144. https://doi.org/10.1080/19425120.2011.556911Oğuz A.R. 2015. A histological study of the kidney structure of Van fish (Alburnus tarichi) acclimated to highly alkaline water and freshwater // Mar. Freshw. Behav. Physiol. V. 48. № 2. P. 135–144. https://doi.org/10.1080/10236244.2015.1004838Ostaszewska T., Krajnik K., Adamek-Urbiałska D. et al. 2018. Effect of feeding strategy on digestive tract morphology and physiology of lake whitefish (Coregonus lavaretus) // Aquaculture. V. 497. P. 32–41. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2018.07.021Raibeemol K.P., Chitra K.C. 2020. Induction of immunological, hormonal and histological alterations after sublethal exposure of chlorpyrifos in the freshwater fish, Pseudotrophus maculatus (Bloch, 1795) // Fish Shellfish Immunol. V. 102. P. 1–12. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2020.04.005Rašković B., Čičovački S., Čirić M. et al. 2016. Integrative approach of histopathology and histomorphometry of common carp (Cyprinus carpio L.) organs as a marker of general fish health state in pond culture // Aquac. Res. V. 47. № 11. P. 3455–3463. https://doi.org/10.1111/are.12795Rebok K., Jordanova M., Tavciovska-Vasileva I. 2011. Spleen histology in the female Ohrid trout, Salmo letnica (Kar.) (Teleostei, Salmonidae) during the reproductive cycle // Arch. Biol. Sci. V. 63. № 4. P. 1023–1030. https://doi.org/10.2298/ABS1104023RReddy P.B., Rawat S.S. 2013. Assessment of aquatic pollution using histopathology in fish as a protocol // Int. Res. J. Environ. Sci. V. 2. № 8. P. 79–82.Resende A.D., Lobo-da-Cunha A., Malhão F. et al. 2010. Histological and stereological characterization of brown trout (Salmo trutta f. fario) trunk kidney // Microsc. Microanal. V. 16. № 6. P. 677–687. https://doi.org/10.1017/S1431927610093918Rocha E., Monteiro R.A.F., Pereira C.A. 1995. Microanatomical organization of hepatic stroma of the brown trout, Salmo trutta fario (Teleostei, Salmonidae): a qualitative and quantitative approach // J. Morphol. V. 223. № 1. P. 1–11. https://doi.org/10.1002/jmor.1052230103Rocha E., Monteiro R.A.F., Pereira C.A. 1997. Liver of the brown trout, Salmo trutta (Teleostei, Salmonidae): a stereological study at light and electron microscopic levels // Anat. Rec. V. 247. № 3. P. 317–328. https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-0185(199703)247:3<317::AID-AR3>3.0.CO;2-RRodrigues R.A., Saturnino K.C., Fernandes C.E. 2017. Liver histology and histomorphometry in hybrid sorubim (Pseudoplatystoma reticulatum × Pseudoplatystoma corruscans) reared on intensive fish farming // Aquac. Res. V. 48. № 9. P. 5083–5093. https://doi.org/10.1111/are.13325Sales C.F., Silva R.F., Amaral M.G.C. et al. 2017. Comparative histology in the liver and spleen of three species of freshwater teleost // Neotrop. Ichthyol. V. 15. № 1. Article e160041. https://doi.org/10.1590/1982-0224-20160041Schindelin J., Arganda-Carreras I., Frise E. et al. 2012. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis // Nat. Methods. V. 9. № 7. P. 676–682. https://doi.org/10.1038/nmeth.2019Smorodinskaya S., Kochetkov N., Gavrilin K. et al. 2023. The Effects of acute bisphenol a toxicity on the hematological parameters, hematopoiesis, and kidney histology of zebrafish (Danio rerio) // Animals. V. 13. № 23. Article 3685. https://doi.org/10.3390/ani13233685Suvarna S.K., Layton C., Bancroft J.D. 2018. Bancroft's theory and practice of histological techniques. S.l.: Elsevier, 557 p. https://doi.org/10.1016/C2015-0-00143-5Yancheva V., Velcheva I., Stoyanova S., Georgieva E. 2016. Histological biomarkers in fish as a tool in ecological risk assessment and monitoring programs: a review // Appl. Ecol. Environ. Res. V. 14. № 1. P. 47–75. https://doi.org/10.15666/aeer/1401_047075